BibTex RIS Cite

The scolocidal effect of propolis on protoscoleces and daugther cysts

Year 2015, Volume: 37 Issue: 1, 4 - 9, 27.03.2015
https://doi.org/10.7197/cmj.v37i1.5000071890

Abstract

SUMMARY

Objective: Scolocidal elements are used in the aim of not scattering the protoscoleces’ outside the cyst during the treatment of cyst hydatid in our present-day. It is hoped from the scolocidal materials; besides its effect on protoscoleces, not being toxic, being easy practicable, not causing sclerozan cholanjit and if possible, penetrating in the daughter vesicules. In this research, the effect of propolis which is a bee product on protoscoleces were investigated. Methods: In our work, daughter vesicules and protoscoleces obtain from the liver of a patient during surgery and propolis from the Black Sea Region were used. Viability tests were done by using 0.1 % eosine solution. After propolis disolved in dimethylsulfoxide, within the range of 50 mg/mL and 0.010 mg/mL using by 0.9% serum physiological solution 100 µl into each of the tube and in 1.,3.,5.,10.,20.,and 30. minutes the rates of viability of protoscolex (4000 protoscolex/mL) are fixed. The research were subjected to daughter vesicules that is 4-7 mm in diameters. The concentration of propolis at 0.80 and 3.12 mg/mL were investigated viability rates of protoscolex at different incubation time and whether the possibilty of penetration to the daughter vesicules. Results: It was seen that protoscolexs were effected by the Propolis at 0.100 mg/mL concentration in the first minute, at 0.050 mg/mL concentration in the 3. minutes, at 0.025 mg/mL concentration at 10. minutes and at 0.010 mg/mL concentration in 20. minutes. For protoscolex in the vesicules at 0.80 mg/mL concentration in 20. minute, in 3.12 mg/mL concentration in 10. minutes were found to be lethal. Conclusions: As the protoscolex could be killed by Propolis which penetrate to daughter cysts in a very short time as 10 minutes, we thing that it will be beneficial completing advanced studies.

Keywords: Propolis, Protoscolex, Daughter cyst, Cyst Hydatid,

 

ÖZET

Amaç: Günümüzde skolosidal ajanlar hidatik kist sıvısının tedavi sırasında kistin dışına dağılmasını önlemek amacıyla kullanılmaktadır. Etkili bir skolosidin protoskoleksler üzerindeki etkisinin yanı sıra, toksik olmayan, kolay uygulanabilen sklerozan kolanjit oluşturmayan ve kız veziküllerin de içine nüfuz edebilen özelliklere sahip olması beklenmektedir. Bu çalışmada doğal bir arı ürünü olan propolisin skolosidal etkisinin araştırılması amaçlanmıştır. Yöntem: Çalışmada, karaciğer hidatik kisti bulunan bir hastadan operasyon sırasında elde edilen, kız veziküller ve protoskoleksler ve Karadeniz bölgesinde elde edilen propolis kullanılmıştır. Canlılık tesbiti %0,1’lik Eosin solüsyonu kullanılarak yapılmıştır. Propolis DMSO içinde çözülerek, %0,9’luk serum fizyolojik içinde 50 mg/mL ile 0,010 mg/mL arasında sulandırılmıştır, (4000 protoskoleks/mL) ve tüplere 100’er µl dağıtılmıştır. Farklı konsantrasyonlardaki propolisin 1.,3.,5.,10.,20.,ve 30. dakikalarda protoskoleksler üzerine etkisi hemositometre lamında sayım yapılarak belirlenmiştir. Ayrıca, 4 ile 7 mm boyutlarında olan çok sayıdaki kız veziküllere 0,80 ve 3,12 mg/mL’de hazırlanan propolis uygulanmış,5.,10.,20.,30., dakikalarda kistler açılarak içlerindeki protoskolekslerin canlılık durumları araştırılmıştır. Bulgular: Propolisin 0,100 mg/mL’de ilk dakikada, 0,050 mg/mL’de 3. dakikada, 0,025 mg/mL’de 10. dakikada; 0,010 mg/mL’de 20.dakikada protoskoleksler üzerine öldürücü etkisi gözlenmiştir. Kız veziküller içindeki protokoleksler 0,80 mg/mL’lik konsantrasyonda 20. dakikada protoskolekslerin %50’si, 3,12 mg/mL’lik konsantrasyonda 10. dakikada ise tamamı etkilenmiştir. Sonuç: Özellikle, 10 dakika gibi kısa bir sürede kız veziküllere de etki edebilen doğal madde propolisin skolosidal ajan olarak kullanılabileceği ve bu konuda daha ileri çalışmalara gereksinim olduğu kanısına varılmıştır.

Anahtar sözcükler: Propolis, protoskoleks, kiz vezikül, kist hidatik

References

  • Saygı G. Hydatidosis in Turkey within the Last Fourteen Years (1979-1993). Cumhuriyet Univer- sity press, Sivas, Turkey 1996.
  • Besim H, Karayalçın K, Hamamcı O, Güngör Ç, Korkmaz A. Scoli- cidal agents in hydatid cyst sur- gery. HPB.Surgery 1998; 10: 347- 51.
  • Karayalçın K, Besim H, Sonisik M, Erverdi N, Korkmaz A, Aras N. Effect of Hypertonic Saline and Alcohol on Viability of Daughter cysts in Hepatic Hydatid Disease. European J Surg 1999; 165: 1043- 4.
  • Kayaalp C, Balkan M, Aydın C, Özgürtaş T, Tanyüksel M, Ki- rimlioğlu V, Akoğlu M, Öner K, Pekcan M. Hypertonic Saline in Hydatid Disease. World S.Surg 2001; 25: 975-9.
  • Puryan K, Karadayı K, Topçu S, Canbay E, Sümer Z, Turan M, Karayalçın K, Şen M. Chlorhexi- dine Glucanote. An ideal Scolicid- al agent in the treatment of intra- peritoneal Hydatidosis W.J. Sur- gery 2005; 29: 227-30.
  • Aliyazıcıoğlu Y, Değer O, Ovali E, Barlak Y, Hosver I, Tekelioğlu Y, Karahan SC. Effects of Turkish polen and propolis extracts on re- spratory burst for K-562 cell lines. International Immonopharmacolo- gy 2005; 5: 1652-7.
  • Bankova V. Recent trends and im- portant developments in propolis research. Evid Based Complement Alternat Med 2005; 2: 29-32.
  • Uzel A, Sorkun K, Önçağ Ö, Çoğulu D, Gençay Ö, Salih B. Chemical compositions and anti- microbial activities of four differ- ent Anatolian propolis samples. Microbiol Res 2005; 160: 189-95.
  • Salomão K, Dantas AP, Borba CM, Campos LC, Machado DG, Aquino Neto FR, de Castro SL. Chemical composition and micro- bicidal activity of extracts from Brazilian and Bulgarian propolis. Lett Appl Microbiol 2004; 38: 87- 92.
  • Marcucci MC, Ferreres F, Garcia- Viguera C, Bankova VS. Phenolic compounds from Brazilian propo- lis with pharmacological activities J. Ethnopharmacol 2001; 74: 105- 12.
  • Marcucci MC. Propolis: chemical composition, biological properties and therapeutic activity. Apidolo- gie 1995; 26: 83-99.
  • Mercan N, Kıvrak I, Duru ME, Katırcıoğlu H, Gülcan S, Mala S, Acar G, Salih B. Chemical compo- sition effects onto microbial and antioxidant activities of propolis collected from different regions of Turkey. Annals of Microbiology 2006; 56: 373-8.
  • Miyataka H, Nishiki M, Matsumo- to H, Fujimoto T, Matsuka M, Satoh T. Evaluation of propolis. I. Evaluation of Brazilian and Chi- nese propolis by enzymatic and physico-chemical methods. Biol Pharm Bull 1997; 20: 496-501.
  • Amaros M, Lurton E, Boustie J, Gire L, Sauvager F, Cormier M. Comparison of the anti-Herpes simplex virus activities of propolis and. J Nat Prod 1994; 57: 644-7.
  • Bosio K, Avanzini C, D’avolio A, Ozino O, Savoia D. In vitro activi- ty of propolis against Streptococ- cus pyogenes. Lett Appl Microbiol 2000; 31: 174-7.
  • Kartal M, Yıldız S, Kaya S, Ku- rucu S, Topçu G. Antimicrobial activity of propolis samples from two different regions of Anatolia. J Ethnopharmacol 2003; 86: 69-73.
  • Murad JM, Calvi SA, Soares AMVC, Bankova V, Sforcin JM. Effect of propolis from Brasil and Bulgaria on fungucidal activity of macrophages against Paracoccidi- odies brasiliensis. J Ethnopharma- col 2002; 79: 331-4.
  • Orsi RO, Sforcin JM, Funari SRC, Bankova V. Effects of Brazilian and Bulgarian propolis on bacteri- cidal activity of macrophages against Salmonella Typhimurium. Int Immunopharmacol 2005; 5: 359-68.
  • Popova M, Silici S, Kaftanoğlu O, Bankova V. Antibacterial activity of Turkish propolis and its qualita- tive and quantitative chemical composition. Phytomedicine 2005; 12: 221-8.
  • Sforcin JM, Fernandes J.R.A, Lopes C.A.M, Bankova V. Sea- sonal effect on Brazilian propolis antibacterial nopharmacol 2000; 73: 243-9.
  • Yıldırım Z, Hacıevliyagil S, Kutlu NO, Aydın NE, Kurkcuoglu M, Iraz M, Durmaz R. Effect of water extract of Turkish propolis on tu- berculosis infection in guinea-pigs. Pharmacol Res 2004; 49: 287-92.
  • Özan F, Polat ZA, Er K, Özan Ü, Değer O. Effect of propolis on survival of periodontal ligament cells: New storage Media for avulsed Teeth. Journal of Endo- dontics 2007; 33: 570-3
  • Öztürk F, Kurt E, Cerci M. The ef- fect of propolis extract in experi- mental chemical corneal injury. Ophthalmic Res 2000; 32: 13-8.
  • Cunha IBS, Salamo K, Shımızu M, Bankava VS. Antitrypanosomal activity of Brazilian propolis from Apis mellifera. Chem Pharm Bull 2004; 52: 602-4.
  • De Castro L, K.O. Higashi, Effect of different formulations of propo- lis on mice infected with Trypano- soma cruzi, J. Ethnopharmacol 1995; 46: 55-8.
  • Higashi KO, S.L. de Castro. Prop- olis extracts are effective against Trypanosoma cruzi and have an impact on its interaction with host cells, J. Ethnopharmacol 1994; 43: 149-55.
  • Prytzyk E, Dantas AP, Salomao K. Flavonoids and trypanocidal activ- ity of Bulgarian propolis. J. Eth- nopharmacol 2003; 88: 189-93
  • Freitas SF, Shinohara L, Sforcin JM, Guimares S. In vitro effects of propolis on Giardia duodenalis trophozoites. Phytomedicine 2006; 13: 170-5.
  • Ferreira FM, CastroRA, Batista MA, Rossi FM, Silveira-Lemos D, Frézard F, Moura SA, Rezende SA. Association of water extract of green propolis and liposomal me- glumine antimoniate in the treat- ment of experimental visceral leishmaniasis. Parasitol Res 2014; 113: 533-43.
  • Duran N, Muz M, Culha G, Duran G, Ozer B. GC-MS analysis and antileishmanial activities of two Turkish propolis types. Parasitol Res 2011; 108: 95-105.
  • da Silva SS, Thomé Gda S, Cata- neo AH, Miranda MM, Felipe I, Andrade CG, Watanabe MA, Pi- ana GM, Sforcin JM, Pavanelli WR, Conchon-Costa I. Brazilian propolis antileishmanial and im- munomodulatory Based Complement Alternat Med 2013; 673058. Evid
  • Monzote Fidalgo L, Sariego Ra- mos I, García Parra M, Cuesta- Rubio O, Márquez Hernández I, Campo Fernández M, Piccinelli AL, Rastrelli L. Activity of Cuban propolis extracts on Leishmania amazonensis and Trichomonas vaginalis. Nat Prod Commun 2011; 6: 973-6.
  • Duran G, Duran N, Culha G, Oz- can B, Oztas H, Ozer B. In vitro antileishmanial activity of Adana propolis samples on Leishmania tropica: a preliminary study. Para- sitol Res 2008; 102: 1217-25.
  • Kismet K, Kilicoglu SS, Kilicoglu B, Erel S, Gencay O, Sorkun K, Erdemli E, Akhan O, Akkus MA, Sayek I. The effects of scolicidal agent propolis on liver and biliary tree.J Gastrointest Surg 2008; 12: 1406-11.
  • Kismet K, Kilicoglu B, Koru O, Tanyuksel M, Oruc MT, Sorkun K, Salih B, Akkus MA. Evaluation on scolicidal efficacy of propolis. Eur Surg Res 2006.

Propolisin protoskoleksler ve kız kistler üzerine skolosidal etkisi

Year 2015, Volume: 37 Issue: 1, 4 - 9, 27.03.2015
https://doi.org/10.7197/cmj.v37i1.5000071890

Abstract

Amaç: Günümüzde skolosidal ajanlar hidatik kist sıvısının tedavi sırasında kistin dışına dağılmasını önlemek amacıyla kullanılmaktadır. Etkili bir skolosidin protoskoleksler üzerindeki etkisinin yanı sıra, toksik olmayan, kolay uygulanabilen sklerozan kolanjit oluşturmayan ve kız veziküllerin de içine nüfuz edebilen özelliklere sahip olması beklenmektedir. Bu çalışmada doğal bir arı ürünü olan propolisin skolosidal etkisinin araştırılması amaçlanmıştır. Yöntem: Çalışmada, karaciğer hidatik kisti bulunan bir hastadan operasyon sırasında elde edilen, kız veziküller ve protoskoleksler ve Karadeniz bölgesinde elde edilen propolis kullanılmıştır. Canlılık tesbiti %0,1’lik Eosin solüsyonu kullanılarak yapılmıştır. Propolis DMSO içinde çözülerek, %0,9’luk serum fizyolojik içinde 50 mg/mL ile 0,010 mg/mL arasında sulandırılmıştır (4000 protoskoleks/mL) ve tüplere 100’er µl dağıtılmıştır. Farklı konsantrasyonlardaki propolisin 1.,3.,5.,10.,20.,ve 30. dakikalarda protoskoleksler üzerine etkisi hemositometre lamında sayım yapılarak belirlenmiştir. Ayrıca, 4 ila7 mm boyutlarında olan çok sayıdaki kız veziküllere 0,80 ve 3,12 mg/mL’de hazırlanan propolis uygulanmış,5.,10.,20.,30., dakikalarda kistler açılarak içlerindeki protoskolekslerin canlılık durumları araştırılmıştır. Bulgular: Propolisin 0,100 mg/mL’de ilk dakikada, 0,050 mg/mL’de 3. dakikada, 0,025 mg/mL’de 10. dakikada, 0,010 mg/mL’de 20. dakikada protoskoleksler üzerine öldürücü etkisi gözlenmiştir. Kız veziküller içindeki protokoleksler 0,80 mg/mL’lik konsantrasyonda 20. dakikada protoskolekslerin %50’si, 3,12 mg/mL’lik konsantrasyonda 10. dakikada ise tamamı etkilenmiştir. Sonuç: Özellikle, 10 dakika gibi kısa bir sürede kız veziküllere de etki edebilen doğal madde propolisin skolosidal ajan olarak kullanılabileceği ve bu konuda daha ileri çalışmalara gereksinim olduğu kanısına varılmıştır

References

  • Saygı G. Hydatidosis in Turkey within the Last Fourteen Years (1979-1993). Cumhuriyet Univer- sity press, Sivas, Turkey 1996.
  • Besim H, Karayalçın K, Hamamcı O, Güngör Ç, Korkmaz A. Scoli- cidal agents in hydatid cyst sur- gery. HPB.Surgery 1998; 10: 347- 51.
  • Karayalçın K, Besim H, Sonisik M, Erverdi N, Korkmaz A, Aras N. Effect of Hypertonic Saline and Alcohol on Viability of Daughter cysts in Hepatic Hydatid Disease. European J Surg 1999; 165: 1043- 4.
  • Kayaalp C, Balkan M, Aydın C, Özgürtaş T, Tanyüksel M, Ki- rimlioğlu V, Akoğlu M, Öner K, Pekcan M. Hypertonic Saline in Hydatid Disease. World S.Surg 2001; 25: 975-9.
  • Puryan K, Karadayı K, Topçu S, Canbay E, Sümer Z, Turan M, Karayalçın K, Şen M. Chlorhexi- dine Glucanote. An ideal Scolicid- al agent in the treatment of intra- peritoneal Hydatidosis W.J. Sur- gery 2005; 29: 227-30.
  • Aliyazıcıoğlu Y, Değer O, Ovali E, Barlak Y, Hosver I, Tekelioğlu Y, Karahan SC. Effects of Turkish polen and propolis extracts on re- spratory burst for K-562 cell lines. International Immonopharmacolo- gy 2005; 5: 1652-7.
  • Bankova V. Recent trends and im- portant developments in propolis research. Evid Based Complement Alternat Med 2005; 2: 29-32.
  • Uzel A, Sorkun K, Önçağ Ö, Çoğulu D, Gençay Ö, Salih B. Chemical compositions and anti- microbial activities of four differ- ent Anatolian propolis samples. Microbiol Res 2005; 160: 189-95.
  • Salomão K, Dantas AP, Borba CM, Campos LC, Machado DG, Aquino Neto FR, de Castro SL. Chemical composition and micro- bicidal activity of extracts from Brazilian and Bulgarian propolis. Lett Appl Microbiol 2004; 38: 87- 92.
  • Marcucci MC, Ferreres F, Garcia- Viguera C, Bankova VS. Phenolic compounds from Brazilian propo- lis with pharmacological activities J. Ethnopharmacol 2001; 74: 105- 12.
  • Marcucci MC. Propolis: chemical composition, biological properties and therapeutic activity. Apidolo- gie 1995; 26: 83-99.
  • Mercan N, Kıvrak I, Duru ME, Katırcıoğlu H, Gülcan S, Mala S, Acar G, Salih B. Chemical compo- sition effects onto microbial and antioxidant activities of propolis collected from different regions of Turkey. Annals of Microbiology 2006; 56: 373-8.
  • Miyataka H, Nishiki M, Matsumo- to H, Fujimoto T, Matsuka M, Satoh T. Evaluation of propolis. I. Evaluation of Brazilian and Chi- nese propolis by enzymatic and physico-chemical methods. Biol Pharm Bull 1997; 20: 496-501.
  • Amaros M, Lurton E, Boustie J, Gire L, Sauvager F, Cormier M. Comparison of the anti-Herpes simplex virus activities of propolis and. J Nat Prod 1994; 57: 644-7.
  • Bosio K, Avanzini C, D’avolio A, Ozino O, Savoia D. In vitro activi- ty of propolis against Streptococ- cus pyogenes. Lett Appl Microbiol 2000; 31: 174-7.
  • Kartal M, Yıldız S, Kaya S, Ku- rucu S, Topçu G. Antimicrobial activity of propolis samples from two different regions of Anatolia. J Ethnopharmacol 2003; 86: 69-73.
  • Murad JM, Calvi SA, Soares AMVC, Bankova V, Sforcin JM. Effect of propolis from Brasil and Bulgaria on fungucidal activity of macrophages against Paracoccidi- odies brasiliensis. J Ethnopharma- col 2002; 79: 331-4.
  • Orsi RO, Sforcin JM, Funari SRC, Bankova V. Effects of Brazilian and Bulgarian propolis on bacteri- cidal activity of macrophages against Salmonella Typhimurium. Int Immunopharmacol 2005; 5: 359-68.
  • Popova M, Silici S, Kaftanoğlu O, Bankova V. Antibacterial activity of Turkish propolis and its qualita- tive and quantitative chemical composition. Phytomedicine 2005; 12: 221-8.
  • Sforcin JM, Fernandes J.R.A, Lopes C.A.M, Bankova V. Sea- sonal effect on Brazilian propolis antibacterial nopharmacol 2000; 73: 243-9.
  • Yıldırım Z, Hacıevliyagil S, Kutlu NO, Aydın NE, Kurkcuoglu M, Iraz M, Durmaz R. Effect of water extract of Turkish propolis on tu- berculosis infection in guinea-pigs. Pharmacol Res 2004; 49: 287-92.
  • Özan F, Polat ZA, Er K, Özan Ü, Değer O. Effect of propolis on survival of periodontal ligament cells: New storage Media for avulsed Teeth. Journal of Endo- dontics 2007; 33: 570-3
  • Öztürk F, Kurt E, Cerci M. The ef- fect of propolis extract in experi- mental chemical corneal injury. Ophthalmic Res 2000; 32: 13-8.
  • Cunha IBS, Salamo K, Shımızu M, Bankava VS. Antitrypanosomal activity of Brazilian propolis from Apis mellifera. Chem Pharm Bull 2004; 52: 602-4.
  • De Castro L, K.O. Higashi, Effect of different formulations of propo- lis on mice infected with Trypano- soma cruzi, J. Ethnopharmacol 1995; 46: 55-8.
  • Higashi KO, S.L. de Castro. Prop- olis extracts are effective against Trypanosoma cruzi and have an impact on its interaction with host cells, J. Ethnopharmacol 1994; 43: 149-55.
  • Prytzyk E, Dantas AP, Salomao K. Flavonoids and trypanocidal activ- ity of Bulgarian propolis. J. Eth- nopharmacol 2003; 88: 189-93
  • Freitas SF, Shinohara L, Sforcin JM, Guimares S. In vitro effects of propolis on Giardia duodenalis trophozoites. Phytomedicine 2006; 13: 170-5.
  • Ferreira FM, CastroRA, Batista MA, Rossi FM, Silveira-Lemos D, Frézard F, Moura SA, Rezende SA. Association of water extract of green propolis and liposomal me- glumine antimoniate in the treat- ment of experimental visceral leishmaniasis. Parasitol Res 2014; 113: 533-43.
  • Duran N, Muz M, Culha G, Duran G, Ozer B. GC-MS analysis and antileishmanial activities of two Turkish propolis types. Parasitol Res 2011; 108: 95-105.
  • da Silva SS, Thomé Gda S, Cata- neo AH, Miranda MM, Felipe I, Andrade CG, Watanabe MA, Pi- ana GM, Sforcin JM, Pavanelli WR, Conchon-Costa I. Brazilian propolis antileishmanial and im- munomodulatory Based Complement Alternat Med 2013; 673058. Evid
  • Monzote Fidalgo L, Sariego Ra- mos I, García Parra M, Cuesta- Rubio O, Márquez Hernández I, Campo Fernández M, Piccinelli AL, Rastrelli L. Activity of Cuban propolis extracts on Leishmania amazonensis and Trichomonas vaginalis. Nat Prod Commun 2011; 6: 973-6.
  • Duran G, Duran N, Culha G, Oz- can B, Oztas H, Ozer B. In vitro antileishmanial activity of Adana propolis samples on Leishmania tropica: a preliminary study. Para- sitol Res 2008; 102: 1217-25.
  • Kismet K, Kilicoglu SS, Kilicoglu B, Erel S, Gencay O, Sorkun K, Erdemli E, Akhan O, Akkus MA, Sayek I. The effects of scolicidal agent propolis on liver and biliary tree.J Gastrointest Surg 2008; 12: 1406-11.
  • Kismet K, Kilicoglu B, Koru O, Tanyuksel M, Oruc MT, Sorkun K, Salih B, Akkus MA. Evaluation on scolicidal efficacy of propolis. Eur Surg Res 2006.
There are 35 citations in total.

Details

Primary Language English
Journal Section Basic Science Research Articles
Authors

Semra Özçelik

Zeynep Sümer

Serpil Değerli

Publication Date March 27, 2015
Published in Issue Year 2015Volume: 37 Issue: 1

Cite

AMA Özçelik S, Sümer Z, Değerli S. The scolocidal effect of propolis on protoscoleces and daugther cysts. CMJ. March 2015;37(1):4-9. doi:10.7197/cmj.v37i1.5000071890